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pinellolab/crispr_selfedit_mapping Docker 镜像 - 轩辕镜像 | Docker 镜像高效稳定拉取服务

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crispr_selfedit_mapping
pinellolab/crispr_selfedit_mapping
pinellolab
CRISPR - Correct 是 Pinello Lab 开发的 Python 工具,用于从原始 FASTQ 和向导 RNA 库数据框进行向导 RNA 映射,能处理因 SpRY 碱基编辑器自编辑或测序错误导致的非完美映射,支持传感器构建体和 UMI,但无法处理插入缺失。
下载次数: 0状态:社区镜像维护者:pinellolab仓库类型:镜像最近更新:2 个月前
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CRISPR - Correct 技术文档

概述

CRISPR - Correct 是由 Pinello Lab 开发的 Python 工具包,主要用于从原始 FASTQ 文件和向导 RNA(guide RNA)库数据框中进行向导 RNA 映射。其核心功能是通过计算汉明距离将观测到的原型间隔区(protospacer)序列映射到最接近的向导 RNA,特别适用于处理因 SpRY 碱基编辑器自编辑或测序错误导致的非完美映射。此外,该工具支持向导 RNA 传感器构建体和 UMI(唯一分子标识符)的解析,可通过正则表达式从测序读段中提取原型间隔区、替代序列(surrogate)、条形码(barcode)等序列。需注意的是,CRISPR - Correct 无法处理原型间隔区中的插入缺失(indel),此类情况建议使用 Pinello Lab 的另一工具 CRISPR BEAN;若未预期自编辑或测序错误,可选择更简单快速的 CRISPR SURF 工具。

核心功能与特性

非完美映射处理
  • 基于汉明距离将观测序列映射到最接近的向导 RNA,有效应对自编辑或测序错误导致的序列不匹配。
  • 设定汉明距离阈值,过滤超出阈值的低置信度映射结果。
传感器构建体与 UMI 支持
  • 支持解析包含原型间隔区、替代序列、条形码和 UMI 的复杂测序数据。
  • 通过正则表达式或位置索引从 FASTQ 读段序列或头部提取目标序列。
高性能与兼容性
  • 支持多 CPU 并行计算,提升大规模样本的处理速度。
  • 可在 Broad Institute 的 Terra 平台运行,适用于超大规模样本分析(工作流文件位于 Terra Firecloud 仓库)。

使用场景与适用范围

适用场景
  • 预期存在 SpRY 碱基编辑器自编辑或显著测序错误,需要进行非完美映射。
  • 实验设计包含向导 RNA 传感器构建体,需同时分析原型间隔区和替代序列的编辑结果。
  • 需要解析 UMI 或条形码以区分相似序列。
非适用场景
  • 无自编辑或测序错误预期:建议使用 CRISPR SURF,操作更简单快速。
  • 存在插入缺失(indel):需使用 CRISPR BEAN。

安装与系统要求

安装

通过 PyPI 安装,命令如下:

bash
pip install crispr - ambiguous - mapping == 0.0.177
系统要求
  • Python 版本:≥3.8 且 <3.12。
  • 操作系统:支持 Python 3.8 - 3.11 的所有操作系统(如 Windows、macOS、Linux)。
  • 硬件建议:
    • 多 CPU 处理器以启用并行计算。
    • 足够的内存以支持映射结果的内存存储(样本越大,需求越高)。
    • 高速磁盘 I/O(如 SSD)可显著提升映射性能。

输入准备

R1 和 R2 解复用 FASTQ 文件

需提供解复用后的 R1(单端或双端)和 R2(双端时)FASTQ 文件。若需处理读段内索引(in - read index),建议先用 UMITools 解析目标序列和索引,再用 BBMap 的 demuxbyname.sh 工具根据头部信息解复用。大规模样本可参考 Terra Firecloud 的预处理流程(pinellolab/CrisprMillipedeGuideDemultiplex)。

条形码与 UMI 正则表达式

若从 FASTQ 头部解析条形码或 UMI,需提供正则表达式。示例如下:

  • 读段头部示例:@lh00134:140:225VLGLT3:7:1101:1028:1080_ANGC_GGCA 1:N:0:GAAATAAG+ACGTCCTG
  • 条形码正则表达式(提取 "GGCA"):BARCODE_REGEX = r"_([^_ ]+)[\s+]"
  • UMI 正则表达式(提取 "GAAATAAG"):UMI_REGEX = r":([^+:]{6})(.{2})\+"
向导 RNA 库表格

需提供 TSV 格式的向导 RNA 库文件,包含以下列:

  • protospacer(必需):原型间隔区序列。
  • surrogate(可选):替代序列。
  • barcode(可选):条形码序列。

要求:同一列的所有序列长度必须一致。示例表格:

tsv
protospacer	surrogate	barcode
TGTCGTGAGGTAGCTACGAC	CAGCAATGTCGTGAGGTAGCTACGACTTGTCA	GCTC
AGTCGTAGCTACCTCACGAC	ATGACAAGTCGTAGCTACCTCACGACATTGCT	GTTG
CCTAGTGGTTATTCGATGTC	AGGTTACCTAGTGGTTATTCGATGTCTCAGAA	CGAA
汉明距离阈值

建议根据序列长度设定阈值,例如:

  • 原型间隔区长度 20:阈值 7
  • 替代序列长度 32:阈值 10
  • 条形码长度 4:阈值 2

使用方法

核心函数

主要映射函数为 crispr_ambiguous_mapping.mapping.get_whitelist_reporter_counts_from_fastq,参数说明如下(关键参数):

参数类别核心参数说明
输入文件whitelist_guide_reporter_df向导 RNA 库数据框(pandas DataFrame)
fastq_r1_fnR1 FASTQ 文件路径
fastq_r2_fnR2 FASTQ 文件路径(双端时)
序列解析(正则){sequence_type}_pattern_regex提取条形码/UMI 等的正则表达式(如 barcode_pattern_regex)
序列解析(位置){sequence_type}_start_position/_length按位置提取序列(如 protospacer_start_position=0, protospacer_length=20)
序列来源is_{sequence_type}_r1/_header指定序列来自 R1/R2 读段或头部(如 is_protospacer_r1=True)
序列校正revcomp_{sequence_type}是否对序列进行反向互补(如 revcomp_surrogate=True)
映射阈值{sequence_type}_hamming_threshold_strict汉明距离阈值(如 protospacer_hamming_threshold_strict=7)
性能cores并行计算核心数
使用示例
python
import crispr_ambiguous_mapping
import pandas as pd

# 加载向导 RNA 库
whitelist_guide_reporter_df = pd.read_table("guide_library.tsv")

# 定义条形码和 UMI 正则表达式
barcode_pattern = r"_([^_ ]+)[\s+]"  # 提取条形码
umi_pattern = r":([^+:]{6})(.{2})\+"  # 提取 UMI

# 执行映射
result = crispr_ambiguous_mapping.mapping.get_whitelist_reporter_counts_from_fastq(
    whitelist_guide_reporter_df=whitelist_guide_reporter_df,
    fastq_r1_fn="read1.fastq.gz",
    fastq_r2_fn="read2.fastq.gz",
    # 条形码和 UMI 解析
    barcode_pattern_regex=barcode_pattern,
    umi_pattern_regex=umi_pattern,
    # 原型间隔区解析(R1 读段前 20 个碱基)
    protospacer_start_position=0,
    protospacer_length=20,
    is_protospacer_r1=True,
    revcomp_protospacer=False,
    # 替代序列解析(R2 读段前 32 个碱基,反向互补)
    surrogate_start_position=0,
    surrogate_length=32,
    is_surrogate_r1=False,
    revcomp_surrogate=True,
    # 汉明距离阈值
    protospacer_hamming_threshold_strict=7,
    surrogate_hamming_threshold_strict=10,
    barcode_hamming_threshold_strict=2,
    # 并行核心数
    cores=8
)
结果输出与可视化

映射结果可通过以下方式处理和可视化:

python
# 提取突变谱
mutations_results = crispr_ambiguous_mapping.processing.get_mutation_profile(
    match_set_whitelist_reporter_observed_sequence_counter_series_results,
    whitelist_reporter_df=whitelist_guide_reporter_df
)

# 绘制突变计数直方图
crispr_ambiguous_mapping.visualization.plot_mutation_count_histogram(
    linked_mutation_counters.protospacer_total_mutation_counter,
    filename="protospacer_mutation_histogram.png"
)

# 绘制三核苷酸突变特征
crispr_ambiguous_mapping.visualization.plot_trinucleotide_mutational_signature(
    mutations_results=mutations_results,
    count_attribute_name="ambiguous_accepted_umi_noncollapsed_mutations",
    filename="trinucleotide_signature.png"
)

# 保存结果(pickle 格式)
crispr_ambiguous_mapping.utility.save_or_load_pickle(
    "./", "mapping_result", py_object=result, date_string=""
)

注意事项

  • 确保向导 RNA 库中各列(原型间隔区、替代序列、条形码)的序列长度一致。
  • 解析序列时,正则表达式与位置索引二选一,无需同时设置。
  • 大规模样本建议使用 Terra 平台或高性能服务器,并启用多 CPU 加速。
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CRISPResso2是一个软件管道,用于从深度测序数据中快速直观地解释基因组编辑实验,通过比对测序reads到参考序列、量化插入/突变/缺失及生成直观图表和数据集来分析编辑结果。
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